Thionin acetate (Thionine acetate) is a metachromatic cationic histology dye used in biological staining widely.

一、细胞染色
实验步骤：
1.准备Thionin acetate溶液： 将Thionin acetate溶解在适当的溶剂中（通常为蒸馏水或PBS），浓度一般在0.1%到0.5%之间。
2. 固定细胞： 将待染色的细胞涂布在载玻片上，风干后使用适当的固定剂（如甲醇或甲醛）固定细胞。
3. 染色： 将Thionin acetate溶液滴加到样本上，染色时间通常为5-10分钟，视需要可延长。
4. 清洗： 用蒸馏水轻轻清洗样本，去除多余的染料。
5.显微镜观察： 使用显微镜观察细胞染色效果，Thionin acetate会产生紫蓝色的染色效果，突出细胞核。
二、 组织切片染色
实验步骤：
1.准备Thionin acetate溶液： 按需配置溶液，浓度一般为0.1%至0.5%。
2.组织切片准备： 将组织切片固定在载玻片上，使用固定剂（如10%福尔马林溶液）进行固定，常规脱水处理后进行透明化。
3. 染色： 将Thionin acetate溶液滴加到切片上，染色时间通常为5-15分钟，视组织类型的不同可适当调整时间。
4. 清洗与脱水： 使用蒸馏水清洗切片，然后进行脱水处理。
5. 封片与观察： 用适当的封片剂封片，然后在显微镜下观察染色效果。
三、 神经组织染色：
实验步骤：
1. 准备Thionin acetate溶液： 溶液浓度通常为0.1%至0.5%。
2.脑组织切片处理： 对脑组织进行常规固定、切片及脱水处理。
3.染色： 将Thionin acetate溶液滴加到切片上，染色时间通常为10-20分钟，适合观察神经组织的细节。
4.清洗与封片： 使用水或PBS清洗切片，之后封片并使用显微镜观察脑组织结构。
注意事项：
1.浓度控制： Thionin acetate的浓度过高可能会导致染色过度，因此需要根据实验需求调整染色浓度。
2.染色时间： 染色时间要根据组织类型和实验需求进行优化，避免染色时间过长导致染色过深或背景过多。
3.组织预处理： 在进行Thionin acetate染色前，必须确保组织切片得到适当的固定和脱水处理，以保证染色效果。
4.显微镜观察： 使用光学显微镜观察样本，Thionin acetate染色的细胞核呈紫蓝色，适合观察细胞和组织结构。

以上信息均来源于已发表文献，具体实验方案请根据实际研究需求进行适当调整。

硫堇(劳氏紫), Thionine acetate

DMSO: 41.67 mg/mL (145.02 mM), Sonication is recommended.

10% DMSO+40% PEG300+5% Tween-80+45% Saline: 2 mg/mL (6.96 mM), Sonication is recommended.