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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 25 T | ¥ 1,096 | In Stock | |
| 25 T * 5 | ¥ 3,288 | In Stock |
25 T规格的产品组成如下:
| 产品编号 | 产品名称 | 产品包装 |
|---|---|---|
| C0197-1 | 增敏液Ⅰ Silver Stain Sensitizer Ⅰ (100×) | 25 mL |
| C0197-2 | 增敏液Ⅱ Silver Stain Sensitizer Ⅱ (5×) | 500 mL |
| C0197-3 | 银染液 Silver Stain (100×) | 25 mL |
| C0197-4 | 显影液Ⅰ Silver Stain Developer Ⅰ (5×) | 500 mL |
| C0197-5 | 显影液Ⅱ Silver Stain Developer Ⅱ (1000×) | 2.5 mL |
| C0197-6 | 终止液 Silver Stain Terminator (20×) | 125 mL |
注:需自备乙醇、乙酸和ddH2O。
SDS-PAGE 凝胶中蛋白条带的显色检测和可视化,用于观察蛋白的存在、分子量及表达情况。
1. 水洗
电泳结束后,将凝胶从玻璃板上取下,放入洁净玻璃皿中,加入足量蒸馏水,轻柔摇动(约70 rpm,以下同)洗涤3 min,以去除残余电泳缓冲液。
2. 固定
a) 配制固定液:取乙醇50 mL、乙酸10 mL、ddH2O 40 mL,混合均匀即得100 mL固定液。
b) 操作:弃去水洗液,加入约100 mL固定液,室温轻摇孵育20 min,以固定蛋白质并去除杂质。如需降低背景,固定时间可延长至40 min以上。
3. 醇洗
a) 配制醇洗液:取乙醇30 mL、ddH2O 70 mL,混合均匀即得100 mL醇洗液。
b) 操作:弃去固定液,加入约100 mL醇洗液,室温轻摇孵育10 min,进一步去除残余固定液和干扰物。
4. 水洗
弃去醇洗液,再加入ddH2O洗涤10 min,以彻底清除乙醇残留。
5. 增敏
a) 配制增敏液:取Silver Stain Sensitizer Ⅰ (100×) 1 mL、Silver Stain Sensitizer Ⅱ (5×) 20 mL、乙醇 30 mL、ddH2O 49 mL,混合均匀即得100 mL增敏液。注意现配现用。
b) 操作:弃去水洗液,加入约100 mL增敏液,室温摇动孵育 5 min,使蛋白条带的银结合位点充分暴露,增强染色灵敏度。
6. 水洗
弃去增敏液,用ddH2O洗涤2次,每次1 min,以去除未结合的试剂。
7. 银染
a) 配制银染液:取Silver Stain (100×) 1 mL、ddH2O 99 mL,混合均匀即得100 mL银染液。注意现配现用。
b) 操作:弃去水洗液,加入约100 mL银染液,避光室温轻摇孵育10 min,使蛋白与银离子结合。
8. 水洗
弃去银染液,用ddH2O洗涤1 min,以减少背景。
9. 显色
a) 配制显色液:取Silver Stain Developer Ⅰ (5×) 20 mL、ddH2O 80 mL,混匀均匀,临用前加入 Silver Stain Developer Ⅱ (1000×) 100 μL,即得100 mL显色液。注意现配现用。
b) 操作:弃去水洗液,加入约100 mL显色液,轻摇显影3–10 min,实时观察条带出现情况。当蛋白条带达到理想强度时,立即进入下一步终止反应。
10. 终止显色
a) 配制终止液:取Silver Stain Terminator (20×)、ddH2O 95 mL,混匀即得100 mL终止液。注意现配现用。
b) 操作:弃去显色液,加入约100 mL终止液,轻摇10 min,终止显影反应并稳定条带。
11. 保存
弃去终止液,用5%乙酸洗涤10 min,去除试剂。染色完成后,样品可直接用于后续分析(如凝胶成像或质谱检测)。如需长期存放,可将银染凝胶置于4°C的1%乙酸溶液中保存,防止变色或背景加深。
注:推荐使用乙酸溶液进行洗涤与保存,因为显色液呈碱性,乙酸可以中和显色液,且乙酸具有轻微固定作用,可以防止蛋白长期保存从而扩散。
室温保存,一年有效。

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