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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 100 T | ¥ 506 | 4-6日内发货 |
FC氧化酶催化FC生成△4-胆甾烯酮和H2O2,过氧化物酶催化H2O2、4-氨基安替比林和酚生成红色醌类化合物,在500nm有吸收峰,其颜色深浅与FC含量成正比。
100T/96S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0081M-ES | 100ml 异丙醇 | 室温保存(自备); |
| CB0081M-WS | 20mL×1 瓶 | 4℃保存; |
| CB0081M-Standard | 粉剂×1 支 | 4℃保存;临用前加入517 μL异丙醇,振荡溶解,即为50 μmol/mL的胆固醇标准溶液,再将其用异丙醇稀释为2 μmol/mL的标准品,待测。 |
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
水浴锅、可调式移液枪、可见分光光度计/酶标仪、微量玻璃比色皿/96孔板、研钵/匀浆器、异丙醇和蒸馏水。
二、游离胆固醇提取:
1.组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL 提取液)进行冰浴匀浆。8000g,4℃离心10min,取上清置冰上待测。
2.细菌、细胞:按照细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入1mL提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声2秒,间隔3秒,总时间3min); 然后8000g,4℃,离心10min,取上清置于冰上待测。
3.血清(浆)样品:直接测定。
三、测定步骤:
1.分光光度计/酶标仪预热 30 min,调节波长到 500 nm,蒸馏水调零。
2.按需取出一定量的工作液,并在 37℃水浴中预热 30min,其余的 4℃保存。
3.按下表依次加入下列试剂:
| 试剂名称 | 空白管(µL) | 测定管(µL) | 标准管(µL) |
|---|---|---|---|
| 异丙醇 | 10 | ||
| 上清 | 10 | ||
| CB0081M-标准液 | 10 | ||
| CB0081M-工作液 | 190 | 190 | 190 |
| 混匀后,室温静置 15min 后于 500nm 下测得吸光度,记为 A空白管、A标准管、A测定管。 | |||
四、FC 含量的计算:
1.血清(浆)中 FC 含量计算
FC含量 (μmol/dL)= C标准液×(A测定管-A空白管)÷(A标准管- A空白管)×100
= 200×(A测定管-A空白管)÷(A标准管- A空白管)
C 标准液:2 μmol/mL;100:单位换算系数1dL=100 mL
2.组织中 FC 含量计算
(1)按样本蛋白浓度计算
FC 含量 (μmol/mg prot)= C标准液×(A测定管-A空白管)÷(A标准管- A空白管)×V样总÷(Cpr×V样总)= 2×(A测定管-A空白管)÷(A标准管- A空白管)÷Cpr
(2)按样本鲜重计算
FC 含量 (μmol/g 鲜重) = C标准液×(A测定管-A空白管)÷(A标准管- A空白管)×V样总÷W
= 2×(A测定管-A空白管)÷(A标准管- A空白管)÷W
注:C标准液:2 μmol/mL;V样总:加入提取液的体积,1mL;Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;W:样本质量,g
3.细胞、细菌中 FC 含量计算
FC 含量 (μmol/104 cell) = C标准液×(A测定管-A空白管)÷(A标准管- A空白管)×V样总÷500= 0.004×(A测定管-A空白管)÷(A标准管-A空白管)
注:C 标准液:2 μmol/mL;500:细菌或细胞数量,500万;V样总:加入提取液的体积,1mL
1.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
2.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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