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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 100 T | ¥ 858 | 4-6日内发货 |
FFA 与铜离子结合形成脂肪酸铜盐,并溶于氯仿;利用铜试剂法测定铜离子含量,即可推算出游离脂肪酸含量。
100T/96S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0080M-A | 100mL×1 瓶 | 4℃保存; |
| CB0080M-B | 10mL×1瓶(自备) | 实验前一天配制,在玻璃瓶中按照正庚烷:无水甲醇:氯仿=24:1:25 的比例配置(自备),盖紧后混匀,室温保存。 |
| CB0080M-C | 4mL×1 瓶 | 4℃保存; |
| CB0080M-D | 粉剂×2 瓶 | 4℃保存。临用前在试剂瓶中加入 13mL 无水乙醇,充分溶解,4℃可保存一周。 |
| CB0080M-Standard | 粉剂×1 瓶 | 室温保存。临用前把试剂转移到10ml玻璃瓶中,加入 7.8 mL 氯仿充分溶解,即为 5μmol/mL 的棕榈酸标准溶液。 |
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
研钵、冰、台式离心机、可调式移液枪、可见分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96 孔板、 两个10ml玻璃瓶 、正庚烷、无水甲醇、氯仿(三氯甲烷)、无水乙醇和蒸馏水。
二、样品中 FFA 提取:
1.血清中 FFA测定:血清样本置于-20℃冰箱保存,待测。
2.组织中 FFA 含量测定:组织用生理盐水冲洗干净后,用吸水纸吸取表面水分,称取约 0.1g,加入1.0 mL CB0080M-A,匀浆后,8000rpm,4℃离心 10min,取上清液,待测。
三、测定步骤:
1.分光光度计/酶标仪预热 30 min 以上,调节波长到 550 nm,蒸馏水调零。
2.CB0080M-C在 37℃水浴中预热 30 min 以上。
3.标准品的稀释:将标准品用氯仿稀释成 1、0.8、0.6、0.4、0.2、0.1、0.05μmol/mL。
4.在1.5mL 离心管中依次加入下列试剂:
| 试剂名称 | 对照管(µL) | 测定管(µL) | 空白管(µL) | 标准管(µL) |
|---|---|---|---|---|
| 蒸馏水 | 10 | |||
| 样本 | 10 | |||
| 氯仿 | 10 | |||
| 标准品 | 10 | |||
| CB0080M-B | 100 | 100 | 100 | 100 |
| CB0080M-C | 40 | 40 | 40 | 40 |
| 充分振荡 10min 后,3000rpm,离心 10min,取上层溶液 50μL | ||||
| 上层溶液 | 50 | 50 | 50 | 50 |
| CB0080M-D | 200 | 200 | 200 | 200 |
| 充分振荡 2min 后,静置 15min,取 0.2mL 于微量比色皿/96 孔板,550 nm 下测吸光值,分别记为 A对照管、A测定管、A空白管、A标准管。 | ||||
注意:对照管和空白管各只做一管。
四、FFA 活力单位的计算:
1.标准曲线的绘制:
以标准溶液的浓度为 x 轴,以ΔA标准 (ΔA=A标准管-A空白管) 为 y 轴,绘制标准曲线,得到方程 y=kx+b。将ΔA(ΔA=A测定管-A对照管)带入方程得到 x。
2.血清中 FFA 含量计算
FFA (μmol/L) = 1000x
3.组织中 FFA 含量计算
(1)按样本蛋白浓度计算
FFA 含量 (μmol/mg prot) = x×V样总÷(Cpr×V样总) = x÷Cpr
(2)按样本鲜重计算
FFA (μmol/g 鲜重) = x×V样总÷W
注: V样总:上清液总体积,1 mL;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样品鲜重,g。1000:单位换算系数,1L=1000mL。
1.CB0080M-D配制应尽量晚配,可在操作到加入CB0080M-C时,再进行配制。
2.必须保证每管的震荡频率及时间一致。
3.尽量在 30min 内完成测定,并且测完后要密封好再丢弃。
4.因所用试剂多数为有机溶剂,同一支吸头多次吸取会造成体积不准确,建议更换吸头。
5.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
6.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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