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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 50 T | ¥ 704 | 4-6日内发货 |
分别用酸性和碱性提取液提取样品中 NAD+和 NADH,NADH 通过 PMS 的递氢作用,还原 氧化型噻唑蓝(MTT)为甲瓒,在 570nm 下检测吸光值;而 NAD+可被乙醇脱氢酶还原为 NADH,进一步采用 MTT 还原法检测,通过吸光值变化即可定量检测辅酶ⅠNAD (H)的含量。
50T/24S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0098S-ES-Acidic | 25mL×1瓶 | 4℃保存; |
| CB0098S-ES-Basic | 25mL×1瓶 | 4℃保存; |
| CB0098S-A | 15 mL×1瓶 | 4℃保存; |
| CB0098S-B | 4 mL×1 瓶 | 4℃保存; |
| CB0098S-C | 粉剂×1 瓶 | -20℃保存,用时加入 4mL 蒸馏水,混匀,剩余试剂 4℃保存一周; |
| CB0098S-D | 粉剂×1 瓶 | 4℃保存,用时加入 4mL 蒸馏水,混匀,剩余试剂 4℃保存一周; |
| CB0098S-E | 1.8mL×1 支 | 4℃保存; |
| CB0098S-F | 30mL×1 瓶 | 4℃保存; |
| CB0098S-G | 50mL×1 瓶 | 4℃保存; |
| CB0098S-NAD-Standard | 粉剂×1支 | -20℃保存,临用前加入 1.5 mL 蒸馏水,即 2 µmol/mL,将其稀释为 1.25 nmol/mL 的 NAD 标准溶液备用; |
| CB0098S-NADH-Standard | 粉剂×1支 | -20℃保存,临用前加入 1.4 mL 蒸馏水,即 2 µmol/mL,将其稀释为 1.25 nmol/mL 的 NADH 标准溶液备用。 |
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
可见分光光度计、台式离心机、可调式移液器、1ml玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
二、NAD+ 和 NADH 的提取:
1.血清(浆)中 NAD+和 NADH 的提取:
(1)NAD+的提取:按照血清(浆)体积(mL):酸性提取液体积(mL)为 1:5~10的比例(建议取约 0.1mL 血清(浆),加入 1mL 酸性提取液),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 碱性提取液使之中和,混匀,10000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
(2)NADH 的提取:按照血清(浆)体积(mL):碱性提取液体积(mL)为 1:5~10的比例(建 议取约 0.1mL 血清(浆),加入 1mL 碱性提取液),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失); 冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 酸性提取液使之中和,混匀,10000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
2.组织中 NAD+和 NADH 的提取:
(1)NAD+ 的提取:按照组织质量(g):酸性提取液体积(mL)为 1:5~10的比例(建议取约 0.1g 组织,加入 1mL 酸性提取液),冰浴研磨,95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴 中冷却后,10000g 4℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 碱性提取液使之中和,混匀,10000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
(2)NADH 的提取:按照组织质量(g):碱性提取液体积(mL)为 1:5~10的比例(建议取约 0.1g 组织,加入 1mL 碱性提取液),冰浴研磨,95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴 中冷却后,10000g 4℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 酸性提取液使之中和,混匀,10000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
3.细胞或细菌中 NAD+和 NADH 的提取:
(1)NAD+ 的提取:先收集细胞或细菌到离心管内,弃上清,按照细菌或细胞数量(104个):酸性 提取液体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 酸性提取液), 超声波破碎 1min(冰浴,强度 20%或 200W,超声 2s,停 1s),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 碱性提取液使之中和,混匀,10000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
(2)NADH 的提取:先收集细胞或细菌到离心管内,弃上清,按照细菌或细胞数量(104个):碱性提取液体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 碱性提取液),超声波破碎 1min(冰浴,强度 20%或 200W,超声 2s,停 1s),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4℃离心 10min;取 500μL 上清液,加入 500μL 酸性提取液使之中和,混匀,10000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
三、测定步骤:
1.分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 570nm,蒸馏水调零。
2.在1.5mL 棕色 EP 管中按下表依次加入下列试剂:
| 试剂名称 | 对照管 (μL) | 测定管 (μL) | NAD或NADH标准管(μL) | 空白管 (μL) |
|---|---|---|---|---|
| 样本 | 50 | 50 | ||
| 标准品 | 50 | |||
| 蒸馏水 | 50 | |||
| CB0098S-A | 250 | 250 | 250 | 250 |
| CB0098S-B | 75 | 75 | 75 | 75 |
| CB0098S-C | 75 | 75 | 75 | 75 |
| CB0098S-D | 75 | 75 | 75 | 75 |
| CB0098S-E | 35 | 35 | 35 | 35 |
| CB0098S-F | 500 | 混匀,室温避光静置 20min | ||
| CB0098S-F | 500 | 500 | 500 | |
| 充分混匀,静置 5min 后,20000g,25℃离心 5min,弃上清,沉淀中加入: | ||||
| CB0098S-G | 1000 | 1000 | 1000 | 1000 |
| 混匀,570nm 下比色,读取吸光值, ΔA测定=A测定管-A对照管,NAD 标准管的记为 ΔA标准 1=A标准管 1-A空白管。NADH 标准管的记为 ΔA标准 2=A标准管 2-A空白管。(空白管只需做 1-2 次) | ||||
注意事项:
1.对照管和测定管的测定步骤的区别:对照管加完CB0098S-A、B、C、D、E后必须马上加CB0098S-F;测定管加完CB0098S-A、B、C、D、E后必须反应 20min 后再加CB0098S-F。
2.操作及反应过程中注意避光。
3.由于每一个测定管需要设一个对照管,本试剂盒 50 管保证测24个NAD+ 或NADH。
4.最好采用新鲜样本进行测定,以准确反映该指标含量。
四、NAD+和 NADH 含量的计算:
a. NAD+含量的计算:
1.血清(浆)中 NAD+含量计算
NAD+含量 (nmol/mL) =ΔA测定÷(ΔA标准1÷C标)×V提取×2÷V血清=25×ΔA测定÷ΔA标准1
2.组织、细菌或细胞中 NAD+含量计算
(1)按样本蛋白浓度计算
NAD+ (nmol/mg prot) =ΔA测定÷(ΔA标准1÷C标)×V提取×2÷(V提取×Cpr)=2.5×ΔA测定÷ΔA标准1 ÷ Cpr
(2)按样本鲜重计算
NAD+ (nmol/g 鲜重) = ΔA测定÷(ΔA标准1÷C标)×V提取×2÷W=2.5×ΔA测定÷ΔA标准1÷W
(3)按细菌或细胞密度计算
NAD+ (nmol/104 cell) =ΔA测定÷(ΔA标准1÷C标)×V提取×2÷500=0.005×ΔA测定÷ΔA标准1
b. NADH 含量的计算:
1.血清(浆)中 NADH 含量计算
NADH 含量 (nmol/mL) =ΔA测定÷(ΔA标准2÷C标)×V提取×2÷V血清=25×ΔA测定÷ΔA标准2
2.组织、细菌或细胞中 NADH 含量计算
(1)按样本蛋白浓度计算
NADH (nmol/mg prot) = ΔA测定÷(ΔA标准2÷C标)×V提取×2÷(V提取×Cpr)=2.5×ΔA测定÷ΔA标准2 ÷ Cpr
(2)按样本鲜重计算
NADH (nmol/g 鲜重) = ΔA测定÷(ΔA标准2÷C标)×V提取×2÷W=2.5×ΔA测定÷ΔA标准2÷W
(3)按细菌或细胞密度计算
NADH (nmol/104 cell) =ΔA测定÷(ΔA标准2÷C标)×V提取×2÷500=0.005×ΔA测定÷ΔA标准2
注:C标:NAD或NADH标准溶液的浓度1.25nmol/mL;V提取:加入提取液体积,1mL;2:提取过程中上清液稀释倍数; V 血清:提取时加入的血清体积,0.1mL;W:样本质量,g;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;500:500 万个细胞。
1.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
2.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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