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Mitochondrial Respiratory Chain ComplexI Activity Assay Kit (Microanalysis)

Mitochondrial Respiratory Chain ComplexI Activity Assay Kit (Microanalysis)

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Mitochondrial Respiratory Chain ComplexI Activity Assay Kit (Microanalysis)
产品编号 CB0163M
别名 线粒体呼吸链复合体Ⅰ活性检测试剂盒(微量法)
线粒体复合体Ⅰ(EC 1.6.5. 3)又称 NADH-CoQ 还原酶或 NADH 脱氢酶,广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞的线粒体中,是线粒体内膜中最大的蛋白复合物。该酶催化一对电子从NADH 传递给 CoQ,同时可使 O2 还原生成 O2-,是呼吸电子传递链上产生 O2-的主要部位。测定该酶活性,不仅可以反映呼吸电子传递链(ETC)状态,而且可以反映活性氧(ROS)生成状态。
规格价格库存数量
100 T
¥ 4,082
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Handling Instruction | TargetMol 检测原理

复合体Ⅰ能够催化 NADH 脱氢生成 NAD+,在 340nm 下测定 NADH 的氧化速率计算出该酶活性的大小。

Handling Instruction | TargetMol 产品规格

一、自备用品:
紫外分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔板(UV板)、研钵/匀浆器、细胞超声破碎仪、丙酮、冰和蒸馏水。

二、样品测定的前处理:
1.准确称取 0.1g 组织或收集 500 万细胞,加入 1mL CB0163M-ES-1,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
2.将匀浆 600g,4℃离心 10min,弃沉淀,留上清。
3.将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心 15min,得到上清液和沉淀。
4.上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白,可用于测定从线粒体泄漏的复合体Ⅰ(此步可选做)。
5.步骤3中的沉淀即为线粒体,加入 200μL CB0163M-ES-1和 200μL CB0163M-ES-2,超声波破碎(冰浴,功率 20%或 200W,超声 5s,间隔 10 秒,重复15次),用于复合体Ⅰ酶活性测定,并且用于蛋白含量测定。

三、测定步骤:
1.紫外分光光度计/酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 340nm,分光光度计蒸馏水调零。
2.样本测定
(1)CB0163M-A于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)预热1 5min。
(2)在微量石英比色皿/96孔板(UV板)中加入10μL 样本、154μL CB0163M-A、20μL 工作液和 16μL CB0163M-D,立即混匀,记录第10s的吸光值A1,迅速将比色皿连同反应液一起放入37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)水浴中准确反应1分钟,之后迅速取出比色皿并擦干,记录1min10s时的吸光度A2,计算ΔA=A1-A2。

四、复合体Ⅰ活力单位的计算:
a.以微量石英比色皿计算:
1.按蛋白浓度计算
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活性 (U/mg prot) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr)÷T=3215.43×ΔA÷Cpr

注:V反总:反应体系总体积,2×10-4 L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:微量石英比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.01 mL;T:反应时间,1min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;109:单位换算系数,1mol=109nmol
2.按样本鲜重计算(检测样本数为100T/48S)
单位的定义:每 g 组织蛋白每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活性1 (U/g质量) = [ΔA1×V反总÷(ε×d)×109]÷(W÷V提取1×V样)÷T =3215.43×ΔA1÷W
复合体Ⅰ活性2(U/g质量)= [ΔA2×V反总÷(ε×d)×109]÷(W÷V提取2×V样)÷T=1286.17×ΔA2÷W
复合体Ⅰ总活性(U/g 质量)=3215.43×ΔA1÷W+1286.17×ΔA2÷W
注:ΔA1:上清测定值;ΔA2:沉淀测定值;V反总:反应体系总体积,2×10-4 L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:微量石英比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.01 mL;V提取1:加入提取液体积,1mL ;V提取2:沉淀重悬体积,(0.2+0.2)0.4mL;T:反应时间,1min;W:样本重量,g;109:单位换算系数,1mol=109nmol
3.按细胞数量计算(检测样本数为100T/48S)
单位的定义:每 106个细胞在反应体系中每分钟消耗1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活性1 (U/106细胞) = [ΔA1×V反总÷(ε×d)×109]÷(N÷V提取1×V样)÷T =3215.43×ΔA1÷N
复合体Ⅰ活性2(U/106细胞)= [ΔA2×V反总÷(ε×d)×109]÷(N÷V提取2×V样)÷T=1286.17×ΔA2÷N
复合体Ⅰ总活性(U/106细胞)=3215.43×ΔA1÷N+1286.17×ΔA2÷N
注:ΔA1:上清测定值;ΔA2:沉淀测定值;V反总:反应体系总体积,2×10-4 L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:微量石英比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.01 mL;V提取1:加入提取液体积,1mL ;V提取2:沉淀重悬体积,(0.2+0.2)0.4mL;T:反应时间,1min; N:细胞数量,以106计;109:单位换算系数,1mol=109nmol
b.以96孔板(UV板)计算:
将公式中的d-1cm改为d-0.5cm进行计算即可。

Handling Instruction | TargetMol 操作说明

一、自备用品:
紫外分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔板(UV板)、研钵/匀浆器、细胞超声破碎仪、丙酮、冰和蒸馏水。

二、样品测定的前处理:
1.准确称取 0.1g 组织或收集 500 万细胞,加入 1mL提取液1,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
2.将匀浆 600g,4℃离心 10min,弃沉淀,留上清。
3.将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心 15min,得到上清液和沉淀。
4.上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白,可用于测定从线粒体泄漏的复合体Ⅰ(此步可选做)。
5.步骤3中的沉淀即为线粒体,加入 200μL 提取液1和 200μL 提取液2,超声波破碎(冰浴,功率 20%或 200W,超声 5s,间隔 10 秒,重复15次),用于复合体Ⅰ酶活性测定,并且用于蛋白含量测定。

三、测定步骤:
1.紫外分光光度计/酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 340nm,分光光度计蒸馏水调零。
2.样本测定
(1)CB0163M-A于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)预热1 5min。
(2)在微量石英比色皿/96孔板(UV板)中加入10μL 样本、154μL CB0163M-A、20μL 工作液和 16μL CB0163M-D,立即混匀,记录第10s的吸光值A1,迅速将比色皿连同反应液一起放入37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)水浴中准确反应1分钟,之后迅速取出比色皿并擦干,记录1min10s时的吸光度A2,计算ΔA=A1-A2。

四、复合体Ⅰ活力单位的计算:
a.以微量石英比色皿计算:
1.按蛋白浓度计算
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活性 (U/mg prot) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr)÷T=3215.43×ΔA÷Cpr

注:V反总:反应体系总体积,2×10-4 L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:微量石英比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.01 mL;T:反应时间,1min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;109:单位换算系数,1mol=109nmol
2.按样本鲜重计算(检测样本数为100T/48S)
单位的定义:每 g 组织蛋白每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活性1 (U/g质量) = [ΔA1×V反总÷(ε×d)×109]÷(W÷V提取1×V样)÷T =3215.43×ΔA1÷W
复合体Ⅰ活性2(U/g质量)= [ΔA2×V反总÷(ε×d)×109]÷(W÷V提取2×V样)÷T=1286.17×ΔA2÷W
复合体Ⅰ总活性(U/g 质量)=3215.43×ΔA1÷W+1286.17×ΔA2÷W
注:ΔA1:上清测定值;ΔA2:沉淀测定值;V反总:反应体系总体积,2×10-4 L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:微量石英比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.01 mL;V提取1:加入提取液体积,1mL ;V提取2:沉淀重悬体积,(0.2+0.2)0.4mL;T:反应时间,1min;W:样本重量,g;109:单位换算系数,1mol=109nmol
3.按细胞数量计算(检测样本数为100T/48S)
单位的定义:每 106个细胞在反应体系中每分钟消耗1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
复合体Ⅰ活性1 (U/106细胞) = [ΔA1×V反总÷(ε×d)×109]÷(N÷V提取1×V样)÷T =3215.43×ΔA1÷N
复合体Ⅰ活性2(U/106细胞)= [ΔA2×V反总÷(ε×d)×109]÷(N÷V提取2×V样)÷T=1286.17×ΔA2÷N
复合体Ⅰ总活性(U/106细胞)=3215.43×ΔA1÷N+1286.17×ΔA2÷N
注:ΔA1:上清测定值;ΔA2:沉淀测定值;V反总:反应体系总体积,2×10-4 L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:微量石英比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.01 mL;V提取1:加入提取液体积,1mL ;V提取2:沉淀重悬体积,(0.2+0.2)0.4mL;T:反应时间,1min; N:细胞数量,以106计;109:单位换算系数,1mol=109nmol
b.以96孔板(UV板)计算:
将公式中的d-1cm改为d-0.5cm进行计算即可。

Handling Instruction | TargetMol 注意事项

1.蛋白定量测定,建议使用TargetMol生产的BCA Protein Quantification Kit (C0050)。
2.为保证实验结果的准确性,需先取1-2个样做预实验,如果测定的吸光值过高(>1.5),可用蒸馏水稀释上清液后再测定,计算结果时注意乘以稀释倍数;若ΔA大于0.4,需将样本稀释适当倍数,计算公式中乘以相应稀释倍数;若ΔA偏小,则可以通过增加加入的样本体积来提高灵敏度。
3.样本蛋白浓度需自行测定,在测定样本和提取液蛋白浓度均需要适当的稀释,由于提取液1中含有一定的蛋白(约1mg/mL),所以在计算样本蛋白浓度时需要减去提取液本身的蛋白(约0.5mg/ml),但更建议对样本中的线粒体进行单独裂解并测定蛋白浓度。
4.推荐使用样本蛋白浓度计算酶活。
5.为延长试剂盒使用时间,所以CB0163M-B和CB0163M-D都多给一支。
6.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
7.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。