使用方法：1. 溶液配制：使用DPBS缓冲盐溶液（无钙镁离子）将冻干粉溶解制备10 mg/mL的储存液，并使用0.22 μM滤膜进行除菌过滤。使用时，用DPBS稀释储存液至工作浓度，细胞分离常用工作浓度为0.6-2.4 U/mL。注意：工作浓度不宜超过2.4 U/mL。2. 组织解离：利用无菌刀或剪刀将组织剪成3-4 mm的块状，使用无菌PBS清洗，然后加入Dispase II溶液（0.6-2.4 U/mL）确保完全浸没，并在37℃下孵育，孵育期间轻微搅拌，直到组织解离。对于难以解离的组织，一般1小时即可完全分离，但长时间（如数小时）孵育对细胞活性无明显影响。有需要时，可用无菌不锈钢网筛过滤消化产物，以分离单细胞和残留组织块；或者在大块组织沉淀后轻轻倒出上层细胞，必要时可使用新鲜dispase进一步解离。离心收集细胞并弃去酶溶液，用培养基重悬细胞沉淀，并在常规条件下培养。3. 细胞传代：用37℃预热的Dispase溶液处理细胞，于37℃孵育5分钟后吸除溶液，继续孵育10分钟，观察显微镜下的细胞分离情况，必要时可延长孵育15分钟。用培养基悬浮并清洗细胞，换用新鲜培养液重悬细胞，并按照常规方法铺板。