使用方法（仅供参考） 1. 溶液配制：使用无钙镁离子的DPBS缓冲盐溶液溶解适量冻干粉，制备成10 mg/mL的储存液，经过0.22 μM滤膜过滤消毒。在使用时，将此储存液用DPBS稀释至工作浓度，通常用于细胞分离的工作浓度为0.6-2.4 U/mL。注：建议避免使用超过2.4 U/mL的浓度。2. 组织的解离：将组织切成3-4 mm的小块，用无菌PBS清洗。加入Dispase II溶液（浓度为0.6-2.4 U/mL），确保组织完全浸没在溶液中，37℃下孵育并轻柔搅拌，直至组织完全解离。对于难解离的组织，通常1小时即可达到分离效果，延长孵育时间不会显著影响细胞活性。如有需要，可通过无菌不锈钢网筛过滤消化产物，以分开单细胞和剩余组织块，或在大块组织沉淀后轻轻倒出上层细胞。如有必要，换用新鲜的dispase溶液以进一步解离剩余组织。离心沉淀细胞，弃去酶溶液；用培养基重悬细胞沉淀，并在常规条件下培养。3. 细胞传代：用预热至37℃的Dispase溶液处理细胞，37℃孵育5分钟；移除溶液，再于37℃孵育10分钟；在显微镜下检查细胞分离情况，如必要，继续孵育15分钟；用培养基悬浮细胞，轻轻旋转，沉淀后的细胞用培养基清洗；最终换用新鲜培养液重悬细胞，并按常规方法铺板。