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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 25 T | ¥ 2,700 | 4-6日内发货 |
甲基柠檬酸合酶催化丙酰CoA和草酰乙酸产生甲基柠檬酰辅酶A,进一步水解产生甲基柠檬酸;该反应促使无色的DTNB转变成黄色的TNB,在 412nm处有特征吸光值。
25T/24S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0240V-A | 25mL×1瓶 | -20℃保存; |
| CB0240V-B | 5mL×1瓶 | -20℃保存; |
| CB0240V-C | 0.5mL×1支 | -20℃保存; |
| CB0240V-D | 25mL×1瓶 | 4℃保存; |
| CB0240V-E | 粉剂×1瓶 | 4℃保存,临用前加入800μL无水乙醇;剩余试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。 |
| CB0240V-F | 粉剂×2支 | -20℃保存,临用前加入400μL蒸馏水;剩余试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。 |
| CB0240V-G | 粉剂×1支 | -20℃保存,临用前加入800μL蒸馏水;剩余试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。 |
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰、无水乙醇和蒸馏水。
二、样本的前处理:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
1.称取约0.1g组织或收集500万细胞,加入1mL CB0240V-A和10μL CB0240V-C,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
2.将匀浆600g,4℃离心5min。
3.弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心10min。
4.上清液即胞浆提取物,可用于测定从线粒体泄漏的CS(此步可选做)。
5.在步骤4中的沉淀中加入200μL CB0240V-B和2μL CB0240V-C,超声波破碎(冰浴,功率20%或200W,超声3秒,间隔10秒,重复30次),用于线粒体CS测定。
三、测定步骤:
1.分光光度计预热30min以上,调节波长至412nm,蒸馏水调零。
2.将CB0240V-D、CB0240V-E、CB0240V-F和CB0240V-G在37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)孵育5min。
3.样本测定:
| 试剂名称 | 测定管(μL) |
|---|---|
| CB0240V-D | 780 |
| CB0240V-E | 30 |
| CB0240V-F | 30 |
| 样本 | 30 |
| CB0240V-G | 30 |
| 将上述试剂按顺序加入1 mL玻璃比色皿中,加CB0240V-G的同时开始计时,在412nm波长下记录20秒时的初始吸光度A1和反应2min后的吸光值A2,计算ΔA=A2-A1。 | |
四、MCS含量计算:
单位定义: 每 mg 组织蛋白每分钟催化产生 1 nmol TNB 定义为一个酶活力单位。
公式:
MCS (nmol/min/mg prot) = [ΔA × V反总 ÷ (ε × d) × 109] ÷ (V样 × Cpr) ÷ T
= 1100 × ΔA ÷ Cpr
单位定义: 每 g 组织每分钟催化产生 1 nmol TNB 定义为一个酶活力单位。
公式:
MCS (nmol/min/g 鲜重) = [ΔA × V反总 ÷ (ε × d) × 109] ÷ (W × V样 ÷ V样总) ÷ T = 222.2 × ΔA ÷ W
单位定义: 每 1 万个细菌或细胞每分钟催化产生 1 nmol TNB 定义为一个酶活力单位。
公式:
MCS (nmol/min/104 cell) = [ΔA × V反总 ÷ (ε × d) × 109] ÷ (500 × V样 ÷ V样总) ÷ T = 0.4444 × ΔA
注:
V反总:反应体系总体积,9×10-4 L;
ε:TNB 摩尔消光系数,1.36×104 L/mol/cm;
d:比色皿光径,1 cm;
V样:加入样本体积,0.03 mL;
V样总:加入提取液体积,0.202 mL;
T:反应时间,2 min;
Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;
W:样本质量,g;
500:细胞或细菌总数,500 万。
1.蛋白定量测定,建议使用TargetMol生产的BCA Protein Quantification Kit (C0050)。
2.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
3.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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