使用方法（该方案仅供参考）：
1.CMFDA储存液的配制
将产品从冰箱取出，放置干燥的室温环境使其回温后再瞬时离心开盖（产品容易吸潮）。用无水DMSO（DMSO必须保证高质量，新鲜无水，避免影响实验效果）溶解CMFDA粉末配制10 mM的储存液，也可以根据实验需求调整配制的储存液浓度，储备液遇水极易分解，建议分装并用封口膜封口，密封干燥保存于-20℃，避免反复冻融。
2.CMFDA工作液的配制
使用前用无血清培养基稀释储存液到0.5-25 µM的工作液浓度，并将工作液预热到37℃，工作液现用现配，一次使用完，不可冻存。备注：具体的工作液浓度可根据不同的实验目的进行调整，通常对于长期染色（至少3天）或快速分裂细胞的染色，需要5-25 μM的染料。对于短期染色（如细胞活力分析等）需要0.5-5 μM的浓度。在有效果的前提下尽可能使用低浓度染料，避免造成细胞毒性。
3.染色方法
3.1悬浮细胞染色
1）离心收集细胞去上清，用37℃预热的CMFDA工作液轻柔地重悬细胞。
2）在细胞正常生长条件下孵育15-45min。
3）离心并去除CMFDA工作液。
4）用新鲜细胞培养液继续培养30min。
5）清洗细胞，如需固定请参考步骤4。
3.2贴壁细胞染色
1）吸除培养液。
2）轻轻加入预热的CMFDA工作液。
3）在细胞正常生长条件下孵育15-45min。
4）更换新鲜细胞培养液继续培养30min。
5）清洗细胞，如需固定请参考步骤4。
4.固定和通透处理（可选）
4.1 固定前，用PBS充分清洗细胞。
4.2 用3.7%多聚甲醛室温固定细胞15 min。
4.3 固定后用PBS漂洗细胞。
4.4 后续如对其他抗体进行染色，细胞需进行通透处理，上述处理的细胞可置于预冷的丙酮中孵育10 min（可选）。
5.荧光显微镜检测
上述处理的细胞用PBS漂洗后，在荧光显微镜下进行检测，CMFDA为绿色荧光，其Ex=492nm，Em=517nm。