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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 100 T | ¥ 770 | 4-6日内发货 |
NAD-MDH催化NADH还原草酰乙酸生成苹果酸,导致340nm处光吸收下降。
100T/96S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0218M-ES | 100 mL×1瓶 | 4℃保存; |
| CB0218M-A | 20 mL×1瓶 | 4℃保存; |
| CB0218M-B | 粉剂×1瓶 | -20℃保存 |
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
紫外分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、微量石英比色皿/96 孔板和蒸馏水。
二、样本准备:
1.细菌、细胞或组织样品的制备:
细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):CB0218M-ES体积(mL)为1000~5000:1的比例(建议2000万细菌或细胞加入1mL CB0218M-ES),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
组织:按照组织质量(g):CB0218M-ES体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL CB0218M-ES),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
2.血清(浆)样品:直接检测。
三、测定步骤:
1.分光光度计预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。
2.检测工作液的配制:用时在CB0218M-B中加入19mL CB0218M-A和0.5mL蒸馏水,充分混匀待用;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
3.测定前将检测工作液在37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)水浴10min以上。
4.操作表
| 试剂名称 | 测定管(μL) |
|---|---|
| 样本 | 5 |
| 检测工作液 | 195 |
| 混匀后立即记录340nm处20s时的吸光值A1和 1min20s后的吸光值A2,计算ΔA=A1-A2。 | |
四、NAD-MDH活性计算:
1.血清(浆)NAD-MDH活力的计算:
单位的定义:每毫升血清(浆)每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
NAD-MDH(nmol/min/mL)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷V样÷T=12860×ΔA
2.组织、细菌或细胞中NAD-MDH活力的计算:
(1)按样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每mg组织蛋白每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
NAD-MDH(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr) ÷T=12860×ΔA÷Cpr
(2)按样本鲜重计算:
单位的定义:每g组织中每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
NAD-MDH(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W× V样÷V样总)÷T =12860×ΔA÷W
(3)按细菌或细胞密度计算:
单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
NAD-MDH(nmol/min/104 cell)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(2000×V样÷V样总)÷T=6.43×ΔA
V反总:反应体系总体积,2×10-4 L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:96孔板光径,0.5cm;V样:加入样本体积,0.005 mL;V样总:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,1 min;W:样本质量,g;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;2000:细胞或细菌总数,2000万。
1.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
2.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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