MQA-P 需溶解在二甲基亚砜 (DMSO) 中以制备 1.0 mM 储备液。用途包括活细胞内 ONOO - 的成像：HeLa 细胞与 MQA-P (5 μM) 孵育 30 分钟作为对照组；用 SIN-1 (100 μM) 预处理 30 分钟，再用 MQA-P (5 μM) 孵育 30 分钟，观察绿色通道 (λ ex =405 nm，λ em =550-670 nm)。用于活细胞黏度成像，HeLa 细胞与 MQA-P (5 μM) 共孵育 30 分钟作为对照组；用莫能菌素 (10 μM) 预处理 30 分钟后，再与 MQA-P (5 μM) 孵育 30 分钟，红色通道图像采用共焦激光扫描显微镜 (λ ex =561 nm，λ em =680-750 nm)。在铁死亡过程中双通道用于 ONOO - 、粘度和极性的成像，HeLa 细胞先用 MQA-P (5 μM) 孵育 30 分钟作为对照，再用 Erastin (50 μM) 预处理 30 分钟，然后用 MQA-P (5 μM) 孵育 30 分钟；荧光图像使用共聚焦激光扫描显微镜，ONOO - 用绿色通道 (λ ex =405nm，λ em =550-670 nm)，而粘度和极性用红色通道 (λ ex =561 nm，λ em =680-750 nm)。

以下是我们建议的方案。此方案仅供参考，应根据您的具体需求进行调整。 首先，从小鼠体内提取正常器官（包括心脏、肝脏、脾脏、肺和肾脏）及肿瘤组织，各自切成 5 μm 的切片。 接着，将这些切片与 MQA-P (20 μM) 孵育30分钟，之后用 PBS (pH 7.4) 清洗三次，再用共聚焦激光扫描显微镜进行成像。绿色通道 (λ ex =405 nm, λ em =550-670 nm) 监测 ONOO - ，红色通道 (λ ex =561 nm, λ em =680-750 nm) 监测粘度和极性。