细胞标记 [1]
本方法适用于凋亡状态的 HeLa 细胞及人外周血单个核细胞（PBMC），而活的 HeLa 细胞与 PBMC 不会被 FITC-Dextran 染色。

1. 采用 43.5℃孵育 1 h、37℃孵育 8 h 的方式诱导细胞凋亡。
2. 将细胞重悬于 100 μL 培养基中，在 Q-prep 管中加入 10 μL 碘化丙啶（PI）与 10 μL FITC-Dextran (MW 40000)混合，使 PI 与 FITC-Dextran 终浓度分别达到 7.5 μM 和 1.13 μM。
3. 将细胞置于室温、避光环境中孵育 25 min。
4. 取 3 mL 已标记的细胞培养基，以 500 g 离心 10 min。
5. 收集离心后的细胞，加入 1 mL 培养基，通过流式细胞术或荧光显微镜检测（PI：Ex=500 nm，Em=600 nm；FITC-Dextran (MW 40000)：Ex=495 nm，Em=525 nm）。
   细胞旁渗透性检测 [4]
6. 在 Transwell 小室的基础培养基中加入终浓度为 0.1 mg/mL 的 FITC-Dextran。
7. 孵育 15 min 后，从 Transwell 插件中收集培养基。
8. 检测荧光信号（Ex=485 nm，Em=538 nm）。
9. 依据荧光强度计算 FITC-Dextran 浓度。
10. 根据浓度结果计算渗透率。

肠屏障功能测定[5]​
1.对小鼠进行4小时饥饿处理。​
2.采用FITC-Dextran (MW 40000)对小鼠实施灌胃操作，灌胃剂量为0.6 mg/g。​
3.在灌胃后4小时内，检测并记录荧光强度（发射波长Em 520 nm）。