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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 50 T | ¥ 968 | 10-12日内发货 |
果胶裂解酶作用于果胶中的α-1,4糖苷键,生成在还原端C4和C5之间位置具有不饱和键的不饱和寡聚半乳糖醛酸,在235nm处有特征吸收峰,测定235nm下吸光度的上升来表示果胶裂解酶的活性。
50T/24S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0297UV-ES | 50mL×1瓶 | 4℃保存 |
| CB0297UV-A | 15mL×1瓶 | 4℃保存 |
| CB0297UV-B | 15mL×1瓶 | 4℃保存 |
| CB0297UV-C | 15mL×1瓶 | 4℃保存 |
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
紫外分光光度计、1 mL石英比色皿、天平、低温离心机、恒温水浴锅、可调式移液枪、研钵/匀浆器/细胞超声破碎仪、冰和蒸馏水。
二、酶液提取
1.组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL CB0297UV-ES),进行冰浴匀浆。10000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
2.细胞、细菌或真菌:按照细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入1mL CB0297UV-ES),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后10000g,4℃离心10min,取上清置于冰上待测(细菌、真菌等难以数量计算的微生物也可以称取 0.1g 细菌/真菌沉淀来 进行前处理)。
3.细胞培养液等:直接检测。
三、测定步骤:
1.分光光度计预热30min,调节波长至235nm,蒸馏水调零。
2.操作表(在EP管中依次加入)
| 试剂名称 | 对照管 (µL) | 测定管 (µL) |
|---|---|---|
| CB0297UV-A | 600 | |
| CB0297UV-B | 600 | |
| 40℃温育3min | ||
| 酶液 | 100 | 100 |
| 混匀,40℃反应30min | ||
| CB0297UV-C | 300 | 300 |
| 混匀,对照管调零,1mL石英比色皿测定235nm处吸光值A。 | ||
四、酶活性计算公式:
1.组织中PL活性
(1)按照蛋白浓度计算
酶活性定义:在40℃,pH5.5条件下,每毫克蛋白每分钟分解果胶产生1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。
PL活性 (U/mg prot) = A÷(ε×d)×V反总×109÷(V样×Cpr)÷T= 64.1×A÷Cpr
(2)按照样本质量计算
酶活性定义:在40℃,pH5.5条件下,每克组织每分钟分解果胶产生1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。
PL活性 (U/g 鲜重) = A÷(ε×d)×V反总×109÷(V样×W÷V样总)÷T = 64.1×A÷W
2.细胞、细菌或真菌PL活性
酶活性定义:在40℃,pH5.5条件下,每104个细胞每分钟分解果胶产生1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。
PL活性 (U/104 cell) = A÷(ε×d)×V反总×109÷(V样×细胞数量÷V样总)÷T = 64.1×A÷N
3.培养液PL活性
酶活性定义:在40℃,pH5.5条件下,每毫升培养液每分钟分解果胶产生1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。
PL活性 (U/mL) = A÷(ε×d)×V反总×109÷V样÷T = 64.1×A
注:ε:不饱和半乳糖醛酸摩尔消光系数:5200L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V反总:反应总体积,1mL;V样:反应体系中样本体积,0.1mL;V样总:加入提取液体积,1mL;Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;W,样本质量,g;T:反应时间,30min;109:换算系数,1mol=109nmol;N:细胞数量,以万计。
1.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
2.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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