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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 50 T | ¥ 1,814 | 10-12日内发货 |
PFP催化6-磷酸果糖转化为1,6-二磷酸果糖,它在醛缩酶和磷酸丙糖异构酶的作用下转变为3-磷酸甘油醛,再由3-磷酸甘油醛脱氢酶和NADH催化生成3-磷酸甘油酸、NAD和磷酸,340nm处的吸光度变化反映了PFP的活性的高低。
50T/48S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0304UV-ES | 50mL×1瓶 | 4℃保存; |
| CB0304UV-A | 30mL×1瓶 | 4℃避光保存; |
| CB0304UV-B | 粉剂×1瓶 | -20℃避光保存。临用前加5mL蒸馏水充分溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。 |
| CB0304UV-C | 粉剂×1瓶 | -20℃避光保存。临用前加5mL蒸馏水充分溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。 |
| CB0304UV-D | 0.5mL×1瓶 | 4℃避光保存; |
| CB0304UV-E | 0.5mL×1瓶 | 4℃避光保存; |
| CB0304UV-F | 5mL×1瓶 | 4℃避光保存; |
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
紫外分光光度计/酶标仪、1mL石英比色皿、天平、低温离心机、研钵。
二、酶液提取
1.组织:按照质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g,加入1mL CB0304UV-ES)加入提取液,冰浴匀浆后于4℃,10000g离心10min,取上清置冰上待测。
2.细胞:按照细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入1mL CB0304UV-ES),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后4℃,10000g离心10min,取上清置冰上待测。
3.液体:直接检测。
三、测定步骤:
1.紫外分光光度计预热30min,调节波长至340nm,蒸馏水调零。
2.取1mL石英比色皿,依次加入:
| 试剂名称 | 测定管(µL) |
|---|---|
| CB0304UV-A | 580 |
| CB0304UV-B | 100 |
| CB0304UV-C | 100 |
| CB0304UV-D | 10 |
| CB0304UV-E | 10 |
| CB0304UV-F | 100 |
| 粗酶液 | 100 |
| 充分混匀,记录340nm处10s的吸光值A1和310s的吸光值A2,△A=A1-A2 | |
四、计算公式:
1.按照样本蛋白浓度计算
酶活单位定义:每毫克组织蛋白每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
PFP (nmol/min /mg prot) = ΔA÷(ε×d)×V反总÷(V样×Cpr)÷T = 321.54×ΔA÷Cpr
2.按照样本质量计算
酶活单位定义:每克组织每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
PFP (nmol/min /g 鲜重) = ΔA÷(ε×d)×V反总÷(W ×V样÷V样总)÷T = 321.54×ΔA÷W
3.按照细胞数量计算
酶活单位定义:每104个细胞每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
PFP (nmol/min/104 cell) = ΔA÷(ε×d)×V反总÷(V样×细胞数量÷V样总)÷T = 321.54×ΔA÷细胞数量
4.按照液体体积计算
酶活单位定义:每毫升液体每分钟消耗1 nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
PFP (nmol/min/mL) = ΔA÷(ε×d)×V反总÷V样÷T = 321.54×ΔA
注:V反总:反应体系总体积,1mL;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.1mL;V样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,5 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g。
1.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
2.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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