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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 50 T | ¥ 1,598 | 10-12日内发货 |
PC催化丙酮酸、ATP、CO2和水生成草酰乙酸、ADP和Pi,苹果酸脱氢酶进一步催化草酰乙酸和NADH生成苹果酸和NAD+,在340nm下测定NADH氧化速率,即可反映PC活性。
50T/48S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0283UV-ES | 100mL×1瓶 | 4℃保存; |
| CB0283UV-A | 47 mL×1瓶 | 4℃保存; |
| CB0283UV-B | 32.8μL×1支 | 4℃保存; |
| CB0283UV-C | 粉剂×1支 | -20℃保存; |
| CB0283UV-D | 粉剂×1支 | -20℃保存; |
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
紫外分光光度计、台式离心机、可调式移液器、1 mL石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
二、样本的前处理:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
1.称取约0.1g组织或收集500万细菌或细胞,加入1mL CB0283UV-ES,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
2.将匀浆600g,4℃离心5min。
3.弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心10min。
4.上清液即胞浆提取物,可用于测定从线粒体泄漏的PC(此步可选做)。
5.在步骤4的沉淀中加入1mL CB0283UV-ES,超声波破碎(冰浴,功率20%或200W,超声3秒,间隔10秒,重复30次),用于线粒体PC活性测定。
三、测定步骤:
1.分光光度计预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。
2.工作液的配制:临用前将CB0283UV-B和CB0283UV-C转移到CB0283UV-A中混合溶解待用。
3.置于37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)预热5分钟;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
4.CB0283UV-D的配制:在CB0283UV-D瓶中加入2.5mL蒸馏水充分溶解待用;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
5.测定操作表(在1mL石英比色皿中加入下列试剂):
| 试剂名称 | 测定管 (µL) |
|---|---|
| 样本 | 50 |
| CB0283UV-D | 50 |
| 工作液 | 900 |
| 立即混匀,记录340nm处初始吸光值A1和 2min后的吸光值A2,计算ΔA=A1-A2。 | |
| 注意:在该试剂盒中,若ΔA大于0.5,需将样本用提取液稀释适当倍数后测定,使ΔA小于0.5可提高检测灵敏度。计算公式中乘以相应稀释倍数。 | |
四、PC活性计算:
1.按样本蛋白浓度计算
单位定义:每mg组织蛋白每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位。
PC (nmol/min/mg prot) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr) ÷T = 1608×ΔA÷Cpr
2.按样本鲜重计算
单位定义:每g组织每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
PC (nmol/min /g 鲜重) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W ×V样÷V样总)÷T = 1608×ΔA÷W
3.按细菌或细胞密度计算
单位定义:每1万个细菌或细胞每分钟消耗1 nmol NADH定义为一个酶活力单位。
PC (nmol/min /104 cell) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总)÷T =3.215×ΔA
注:V反总:反应体系总体积,1×10-3 L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.05 mL;V样总:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,2 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500万。
1.蛋白定量测定,建议使用TargetMol生产的BCA Protein Quantification Kit (C0050)。
2.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
3.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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