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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 50 T | ¥ 286 | 4-6日内发货 |
SDH 催化琥珀酸脱氢生成延胡索酸,脱下的氢通过吩嗪二甲酯硫酸(PMS)传递还原 2,6-二氯酚靛酚(DCPIP),并且在 600nm 处具有特征吸收峰,通过 600nm 吸光度的变化,测定 2,6-DPIP 的还原速度,代表 SDH 酶活性。
50T/48S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0133S-A | 50ml×1 瓶 | -20℃保存 |
| CB0133S-B | 10ml×1 瓶 | -20℃保存 |
| CB0133S-C | 1ml×1支 | -20℃保存 |
| CB0133S-D | 5ml×1 瓶 | 4℃保存 |
| CB0133S-E | 粉剂×1 支,临用前加入 2ml蒸馏水 | 4℃保存 |
| CB0133S-F | 粉剂×1 支,临用前加入 2ml蒸馏水 | -20℃保存 |
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
可见分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
二、样本的前处理:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
1.称取约 0.1g 组织或收集 500 万细菌或细胞,加入 1mL CB0133S-A和10 μL CB0133S-C,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
2.将匀浆 600g,4℃离心 5min。
3.弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心 10min。
4.上清液即胞浆提取物,可用于测定从线粒体泄漏的 SDH(此步可选做)。
5.在步骤4的沉淀中加入 200μL CB0133S-B和2μL CB0133S-C,超声波破碎(冰浴,功率 20%或 200W, 超声 3 秒,间隔 10 秒,重复 30 次),用于线粒体 SDH 活性测定。
三、测定步骤:
| 试剂名称 | 测定管 (µL) |
|---|---|
| CB0133S-D | 60 |
| CB0133S-E | 30 |
| 蒸馏水 | 800 |
| 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)保温 10min 左右 | |
| 样本 | 30 |
| CB0133S-F | 30 |
| 用蒸馏水调零后,依次加各试剂到 1 mL 玻璃比色皿中,在加入CB0133S-F的同时开始计时,混匀,在 600 nm 波长下记录 20 秒时的初始吸光度 A1 和 1 分 20 秒时的吸光度 A2,计算ΔA=A1-A2 | |
四、计算公式:
1.按样本蛋白浓度计算
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定义为一个酶活性单位。
SDH 活性 (U/mg prot) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(Cpr×V样)÷T = 1508×ΔA÷Cpr
2.按样本鲜重计算
单位的定义:每 g 组织每分钟消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定义为一个酶活性单位。
SDH 活性 (U/g 鲜重) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W× V样÷V样总)÷T = 304.6×ΔA÷W
3.按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每1 万个细菌或细胞每分钟消耗1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定义为一个酶活性单位。
SDH 活性 (U/104 cell) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总)÷T = 0.609×ΔA
注: V反总:反应体系总体积,9.5×10-4 L;ε:2,6-二氯吲哚酚摩尔消光系数,2.1×104 L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.03 mL;V样总:加入提取液体积,0.202 mL;T:反应时间,1 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500 万。
1.测定过程中所有试剂和样本在冰上放置,以免变性失活。
2.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
3.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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