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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 50 T | ¥ 1,056 | 10-12日内发货 |
PDH 催化丙酮酸脱氢,同时还原 2,6-二氯酚靛酚(2,6-DCPIP),从而导致 605nm 光吸收的减少。
50T/48S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0191S-A | 50mL×1 瓶 | -20℃保存; |
| CB0191S-B | 10mL×1 瓶 | -20℃保存; |
| CB0191S-C | 1mL×1支 | -20℃保存; |
| CB0191S-D | 50mL×1瓶 | 4℃保存; |
| CB0191S-E | 粉剂×1 支 | 4℃保存; |
| CB0191S-F | 粉剂×1 支 | 4℃保存; |
| CB0191S-G | 粉剂×1 支 | 4℃保存; |
| CB0191S-H | 粉剂×1 支 | 4℃保存; |
| 工作液配制: | 临用前把CB0191S-E、F、G、H转移到CB0191S-D中混合溶解,置于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)水浴 10min;用不完的试剂 4℃保存一周; | |
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
可见分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1ml玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
二、样本的前处理
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
1.称取约 0.1g 组织或收集 500 万细胞,加入 1mL CB0191S-A和 10μL CB0191S-C,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
2.将匀浆 600g,4℃离心 5min。
3.弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心 10min。
4.上清液即胞浆提取物,可用于测定从线粒体泄漏的 PDH(此步可选做)。
5.在步骤4的沉淀中加入 200μL CB0191S-B和 2μL CB0191S-C,超声波破碎(冰浴,功率 20%或200W,超声 3 秒,间隔 10 秒,重复 30 次),用于线粒体 PDH 活性测定。
三、测定步骤:
1.分光光度计或酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 605nm,蒸馏水调零。
2.工作液配制:见产品组成表。工作液于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)中孵育 5min。
3.在1mL 玻璃比色皿中按顺序加入下列试剂:
| 试剂名称 | 测定管 (μL) |
|---|---|
| 样本 | 50 |
| 工作液 | 900 |
| 混匀,立即记录 605nm处初始吸光值 A1 和 1min 后的吸光值 A2,计算 ΔA=A1-A2。 | |
四、PDH 活性计算:
1.按照样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定义为一个酶活性单位。
PDH 活性 (U/mg prot) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr) ÷T = 905×ΔA÷Cpr
2.按样本鲜重计算:
单位的定义:每 g 组织每分钟消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定义为一个酶活性单位。
PDH 活性 (U/g 鲜重) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W×V样÷V样总)÷T = 182.8×ΔA÷W
3.按细菌或细胞密度计算:
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定义为一个酶活性单位。PDH 活性 (U/104 cell) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总)÷T = 0.366×ΔA
注: V反总:反应体系总体积,9.5×10-4 L;ε:2,6-二氯吲哚酚摩尔消光系数,2.1×104 L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.05 mL;V样总:加入提取液体积,0.202 mL;T:反应时间,1 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细 胞总数,500 万。
1.测定过程中所有样本在冰上放置并于 2 小时内检测,以免变性和失活。
2.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
3.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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