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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 100 T | ¥ 3,456 | 4-6日内发货 |
复合体Ⅴ水解 ATP 产生 ADP 和 Pi,通过测定 Pi 增加速率来测定复合体Ⅴ活性。
100T/48S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0096M-A | 60mL×1 瓶 | -20℃保存; |
| CB0096M-B | 50mL×1 瓶 | -20℃保存; |
| CB0096M-C | 1 mL×1 瓶 | -20℃保存; |
| CB0096M-D | 粉剂×1 支 | -20℃保存;临用前加入1mL 蒸馏水,充分溶解备用,剩余试剂分装-20℃保存4周,避免反复冻融; |
| CB0096M-E | 4mL×1 瓶 | 4℃保存; |
| CB0096M-F | 粉剂×1 瓶 | 4℃保存;用前加入2mL蒸馏水充分混匀;4℃保存一周; |
| CB0096M-G | 粉剂×1 瓶 | 4℃保存;用前加入5mL蒸馏水充分混匀;4℃保存一周; |
| CB0096M-H | 粉剂×1 瓶 | 4℃保存;用前加入5mL蒸馏水充分混匀;4℃保存一周; |
| CB0096M-I | 5mL×1 瓶 | 室温保存; |
| CB0096M-Standard | 1mL×1 支 | 4℃保存(10 μmol/mL磷标液); |
| 标准磷应用液(0.5μmol/mL)配制:将 CB0096M-Standard用蒸馏水 20 倍稀释充分混匀即可 | ||
| 定磷试剂的配制:按 H2O: CB0096M-G:H:I=2:1:1:1 的比例配制,配好的定磷试剂应为浅黄色。若无色则试剂失效,若是蓝色则为磷污染(请根据需要,用多少配多少)。 注意:配试剂最好用新的烧杯、玻棒和玻璃移液器,或者一次性塑料器皿,以避免磷污染。 |
||
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
可见分光光度计/酶标仪、微量玻璃比色皿/96孔板、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、研钵、冰和蒸馏水。
二、样品测定的前处理:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
1.准确称取 0.1g 组织或收集 500 万细菌或细胞,加入 1mL CB0096M-A和 10μL CB0096M-C,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
2.将匀浆 600g,4℃离心 5min。
3.弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心 10min。
4.上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白,可用于测定从线粒体泄漏的复合体Ⅴ(此步可选做)。
5.步骤4中的沉淀即为线粒体,加入 800μL CB0096M-B和 8μL CB0096M-C,超声波破碎(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10 秒,重复 30 次),用于复合体Ⅴ酶活性测定。
三、测定步骤:
1.酶促反应:在 EP管中加入下列试剂:
| 试剂名称 | 对照管(µL) | 测定管(µL) | 标准管(µL) | 空白管(µL) |
|---|---|---|---|---|
| CB0096M-D | 10 | 10 | ||
| CB0096M-E | 40 | 40 | ||
| 样本 | 50 | |||
| 混匀, 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)准确水浴 30min | ||||
| CB0096M-F | 20 | 20 | ||
| 样本 | 50 | |||
| 混匀,8000rpm,常温离心 10min,取上清液待测 | ||||
2.定磷,在微量玻璃比色皿或96孔板中加入:
| 上清液 | 40 | 40 | ||
|---|---|---|---|---|
| 标准磷应用液 | 40 | |||
| 蒸馏水 | 40 | |||
| 定磷试剂 | 200 | 200 | 200 | 200 |
| 混匀,室温反应10min 左右,在 660nm 处分别记为 A对照管、A测定管、A标准管、A空白管,计算 ΔA测定=A测定管-A对照管,ΔA标准=A标准管-A空白管。 | ||||
四、复合体Ⅴ活性计算:
1.按样本蛋白浓度计算
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟产生 1 nmol 无机磷定义为一个酶活性单位。
复合体Ⅴ活性 (U/mg prot) = ΔA测定÷ΔA标准×C 标准×V酶促×1000÷(Cpr×V样本)÷T =40×ΔA测定÷ΔA标准÷Cpr
此法需要自行测定样本蛋白质浓度。
2.按样本鲜重计算(检测样本数为 100T/24S)
单位的定义:每 g 组织每分钟产生 1 nmol无机磷定义为一个酶活性单位。
复合体Ⅴ活性 1 (U/g 质量) =ΔA1÷ΔA标准×C标准×V酶促×1000÷(W÷V提取1×V样本)÷T =40×ΔA1÷ΔA标准÷W
复合体Ⅴ活性 2(U/g 质量)=ΔA2÷ΔA标准×C标准×V酶促×1000÷(W÷V提取2×V样本)÷T =32×ΔA2÷ΔA标准÷W
复合体Ⅴ总活性(U/g 质量)=40×ΔA1÷ΔA标准÷W+32×ΔA2÷ΔA标准÷W
注:C 标准:标准溶液浓度,0.5μmol/mL;1000:单位换算系数,1μmol=1000nmol;Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL,需自行测定;V样本:样本体积,0.05mL;V 酶促:酶促反应总体积,0.12mL;ΔA1:上清测定值;ΔA2:沉淀测定值;V提取1:加入提取液体积,1.01mL;V提取2:沉淀重悬体积,0.808mL;T:反应时间,30min。
1.蛋白定量测定,建议使用TargetMol生产的BCA Protein Quantification Kit (C0050)。
2.为保证实验结果的准确性,需先取 1-2 个样做预实验,如果测定的吸光值过高(>1.2),可用蒸馏水稀释上清液后再测定,计算结果时注意乘以稀释倍数;若 ΔA 大于 0.4,需将样本稀释适当倍数,计算公式中乘以相应稀释倍数;若 ΔA 偏小,则可以通过增加加入的样本体积来提高灵敏度。
3.推荐使用样本蛋白浓度计算酶活,若用样本质量计算,则需加测胞浆提取物酶活,上清和沉淀酶活之
和方为总酶活。
4.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
5.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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