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别名 细胞毒性乳酸脱氢酶 (LDH) 检测试剂盒
乳酸脱氢酶(Lactate Dehydrogenase, LDH)是一种广泛存在于细胞质中的胞内酶,参与糖酵解过程中乳酸与丙酮酸之间的可逆转化。当质膜受损时,LDH迅速释放到细胞培养上清液中,这是细胞发生凋亡、坏死和其他形式细胞损伤的关键特征。因此,上清中LDH的活性水平可作为评估细胞膜完整性和细胞毒性的重要生物标志物,广泛应用于药物毒理、细胞活力、免疫细胞杀伤等研究。
本试剂盒基于LDH催化乳酸(Lactate)转化为丙酮酸(Pyruvate),并伴随NAD⁺还原为NADH的反应,随后NADH进一步与INT反应生成橙红色化合物甲臜(formazan)。甲臜在490 nm处有较高的吸光值,并与LDH活性呈正比。因此通过测定吸光度,即可定量检测LDH活性,从而间接反映细胞损伤或凋亡程度。

乳酸脱氢酶(Lactate Dehydrogenase, LDH)是一种广泛存在于细胞质中的胞内酶,参与糖酵解过程中乳酸与丙酮酸之间的可逆转化。当质膜受损时,LDH迅速释放到细胞培养上清液中,这是细胞发生凋亡、坏死和其他形式细胞损伤的关键特征。因此,上清中LDH的活性水平可作为评估细胞膜完整性和细胞毒性的重要生物标志物,广泛应用于药物毒理、细胞活力、免疫细胞杀伤等研究。
本试剂盒基于LDH催化乳酸(Lactate)转化为丙酮酸(Pyruvate),并伴随NAD⁺还原为NADH的反应,随后NADH进一步与INT反应生成橙红色化合物甲臜(formazan)。甲臜在490 nm处有较高的吸光值,并与LDH活性呈正比。因此通过测定吸光度,即可定量检测LDH活性,从而间接反映细胞损伤或凋亡程度。
| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 500 T | ¥ 1,310 | 现货 |
500 T规格的产品组成如下:
| 产品编号 | 产品名称 | 产品包装 |
|---|---|---|
| C0058-1 | Lysis Solution | 5 mL |
| C0058-2 | Substrate Solution | 25 mL |
| C0058-3 | Dye Solution | 250 μL |
| C0058-4 | Stop Solution | 25 mL |
1. 预实验:LDH细胞毒性试验的细胞数优化
由于不同的细胞类型含有不同量的LDH,因此需要通过预实验确定最佳细胞数。
1)制备连续稀释的细胞液,吸取100 µL于96孔板,每种密度设置两组三个复孔。
注:a)A组用于最大LDH活性检测,B组用于自发LDH活性检测。b)最大细胞密度是根据预铺板结果而定,加入Lysis Solution之前最大细胞密度孔的细胞密度约为80-90%。
2)贴壁细胞需在37℃培养箱过夜培养,待细胞贴壁;悬浮细胞种板后即可进行检测。
3)向A组最大LDH活性稀释系列的三复孔中加入10 µL Lysis Solution,轻轻混合均匀。向B组自发LDH活性稀释系列的三复孔中加入10 µL培养基,轻轻混合均匀。
注:移液时不要产生气泡,因为气泡会影响准确的吸光度读数。
4)37℃培养箱孵育30 min。
5)将Substrate Solution和Dye Solution以100:1的比例混合,配制成Working Solution。例如取1 mL Substrate Solution与10 μL Dye Solution,混合均匀配成1.01 mL Working Solution,可用于20个孔的检测。
注:Working Solution不稳定,需要现配现用,配制和使用过程中均要注意避光。
6)将50 µL上清液转移到96孔平底酶标板上。
7)向每孔中加入50 µL Working Solution,轻轻混合均匀。室温下避光孵育20-40 min。
8)向每个样品孔加入50 µL Stop Solution,轻轻混合均匀。确保溶液中无气泡,立即检测490 nm和680 nm处的吸光度。从主波长测量值(490 nm)中减去背景吸光度(680 nm)。
9)绘制最大LDH活性吸光度值、自发LDH活性吸光度值与细胞数的关系图,以确定LDH细胞毒性测定的线性范围和最佳细胞数。对于目标细胞的浓度,其最大LDH活性吸光度值应小于2.0,且最大LDH活性吸光度值-自发LDH活性吸光度值应大于0.2。
2. 细胞毒性实验
1)组别设置
| 化合物处理 | 最大LDH活性 | 最大LDH活性对照 | 自发LDH活性 | 培养基对照 | |
|---|---|---|---|---|---|
| 细胞(μL) | 100 | 100 | - | 100 | - |
| 培养基(μL) | - | - | 100 | 10 | 110 |
| 化合物(μL) | 10 | - | - | - | - |
| Lysis Solution(μL) | - | 10 | 10 | - | - |
2)在96孔板中接种细胞悬液,100 μL/孔,三复孔,最佳细胞数由预实验确定。
3)贴壁细胞需在37℃培养箱过夜培养,待细胞贴壁;悬浮细胞种板后即可进行检测。
4)孵育过夜后,进行如下处理:向自发LDH活性一组三复孔细胞中加入10 μL培养基;向化合物处理LDH活性三复孔细胞中加入10 μL不同浓度的化合物;最大LDH活性不做处理。
5)37℃培养箱孵育适当时间。
6)向最大LDH活性对照的三重孔中加入10 µL Lysis Solution,轻轻混合均匀。
注:移液时不要产生气泡,因为气泡会影响准确的吸光度读数。
7)37℃培养箱孵育30 min。
8)将Substrate Solution和Dye Solution以100:1的比例混合,配制成Working Solution。例如取1 mL Substrate Solution与10 μL Dye Solution,混合均匀配成1.01 mL Working Solution,可用于20个孔的检测。
注:Working Solution不稳定,需要现配现用,配制和使用过程中均要注意避光。
9)每个样品取50 µL的上清液转移到96孔平底酶标板上,一式三孔。
10)向每孔中加入50 µL Working Solution,轻轻混合均匀。室温下避光孵育20-40 min。
11)向每个样品孔加入50 µL Stop Solution,轻轻混合均匀。确保溶液中无气泡,立即检测490 nm和680 nm处的吸光度。从主波长测量值(490 nm)中减去背景吸光度(680 nm)。
12)使用以下公式计算细胞毒性百分比
细胞毒性(%)=(A-B)/(C-B)*100%
A=化合物处理吸光度-培养基对照吸光度
B=自发LDH活性吸光度-培养基对照吸光度
C=最大LDH活性吸光度-最大LDH活性对照吸光度
-20℃保存一年。

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