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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 50 T | ¥ 935 | 10-12日内发货 |
ICDHm 催化 NAD+ 还原生成 NADH,导致 340nm 处光吸收上升。
50T/48S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0200UV-A | 50mL×1 瓶 | -20℃保存; |
| CB0200UV-B | 10mL×1 瓶 | -20℃保存; |
| CB0200UV-C | 1mL×1 支 | -20℃保存; |
| CB0200UV-D | 60mL×1 瓶 | 4℃保存; |
| CB0200UV-E | 粉剂×1 支 | 4℃保存; |
| CB0200UV-F | 粉剂×1 支 | -20℃保存; |
| 工作液配制:临用前把CB0200UV-E,F转移至CB0200UV-D中充分溶解待用;剩余试剂4℃保存一周有效; | ||
| CB0200UV-G | 粉剂×1 支 | -20℃保存;临用前加入 3mL 蒸馏水充分混匀待用,现配现用。 |
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
紫外分光光度计、1mL 石英比色皿、低温离心机、水浴锅、可调式移液枪、冰和蒸馏水。
二、样本的前处理:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
1.称取约 0.1g 组织或收集 500 万细菌或细胞,加入 1mL CB0200UV-A和 10μL CB0200UV-C,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
2.将匀浆 600g,4℃离心 5min。
3.弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心 10min。
4.上清液即胞浆提取物,可用于测定从线粒体泄漏的 ICDHm(此步可选做)。
5.在步骤4的沉淀中加入 200μL CB0200UV-B和 2μL CB0200UV-C,超声波破碎(冰浴,功率 20%或200W,超声 3 秒,间隔 10 秒,重复 30 次),用于线粒体 ICDHm 活性测定。
三、测定步骤
1.分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 340nm 处,蒸馏水调零。
2.工作液于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)孵育 5min。
3.在 1mL 石英比色皿中依次加入:
| 试剂名称 | 测定管(µL) |
|---|---|
| CB0200UV-G | 60 |
| 样本 | 80 |
| 工作液 | 1000 |
| 混匀,立即记录 340nm 处 20s 时的吸光值 A1 和 2min 20s 时的吸光值 A2,计算 ΔA=A2-A1。 | |
四、ICDHm 活性计算:
1.按样本蛋白浓度计算
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟生成 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活性单位。
ICDHm活性 (U/mg prot) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(Cpr×V样)÷T = 1145×ΔA÷Cpr
2.按样本鲜重计算
单位的定义:每 g 组织每分钟生成 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活性单位。
ICDHm活性 (U/g 鲜重) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W ×V样÷V样总)÷T = 231.3×ΔA÷W
3.按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟生成 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活性单位。
ICDHm活性 (U/104 cell) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总)÷T = 0.463×ΔA
注: V反总:反应体系总体积,1.14×10-3 L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.08 mL;V样总:加入提取液体积,0.202 mL;T:反应时间,2min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500 万;109:单位换算系数, 1 mol = 109 nmol。
1.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
2.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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