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规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
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10 mL | ¥ 1,183 | 5日内发货 | |
50 mL | ¥ 4,969 | 5日内发货 |
一、产品稀释与培养基配制
B-27 无血清添加剂(50X)为 50 倍浓缩液,使用前需按 1:50 稀释至 1X 工作浓度。例如,配制 50 mL 培养基时,加入 1 mL B-27 添加剂至 49 mL 基础培养基(如 Neurobasa 或 Neurobasa-A)中,混匀使用。
配制神经元完全培养基的步骤如下:
1.将本产品于 4 °C 条件下缓慢解冻。
2.使用前在无菌条件下,向神经元基础培养基中加入 2% B-27 添加剂及 0.5 M L-谷氨酰胺,配制为神经元完全培养基。配制好的完全培养基可在 2–8 °C 条件下避光储存一周。
注:
a) L-谷氨酰胺在水溶液中不稳定,其分解产物可能对细胞有毒,因此需在配制时新鲜添加。
b) 对于原代海马神经元培养,推荐在神经元完全培养基中额外补充 25 μM L-谷氨酸;自培养第 4 天起换液时不再添加。
c) 剩余未使用的添加剂建议按工作体积等分,储存于 -20 °C,避免反复冻融。
二、神经元培养步骤(以大鼠胎儿皮层神经元为例)
1.培养基预处理:
1)使用冷的无菌 0.05 mg/L 多聚赖氨酸水溶液包被培养表面(如玻璃或细胞培养级塑料),使用量为 0.15 mL/cm²;37 °C 放置过夜(16 h)。
2)去除包被液后,用无菌蒸馏水冲洗两次,彻底晾干后可使用或于 4 °C 保存两周。
2.细胞接种与培养:
1)对分离的原代神经元或复苏的冻存神经元进行培养。
2)将神经元完全培养基预热至 37 °C;建议接种密度为 2×10⁵ 个细胞/孔(以 24 孔板为例),可根据实验需求调整。
3) 细胞接种后置于 37 °C、5% CO₂培养箱中。
4) 接种 16–24 h后更换一半体积的新鲜完全培养基,之后每 2–3 天换液一次。
三、原代神经元的分离
适用于培养受精 18 天(E18)大鼠胚胎的海马神经元及大脑皮层神经元:
1.从 E18 胚胎中分离大脑皮层和双侧海马组织。
2.将所有组织转移至预先加入完全培养基的锥形管中,静置直至组织自然解体。
3.组织沉降后,小心去除上清液,仅保留覆盖组织的最少量培养基。
4.在不含钙的培养基中加入 2 mg/L 过滤灭菌的木瓜蛋白酶溶液,37 °C 下酶解约 30 min,每 5 min轻轻摇动一次锥形管;每对海马组织使用 2 mL 酶液。
5.加入两倍体积的完全培养基以恢复二价阳离子浓度,终止酶解反应。
6.使未解离组织沉降约 2 min,然后将上清转移至 15 mL 离心管,离心 150×g,5 min。
7.将沉淀物重悬于 1 mL 神经元完全培养基中,取 10 μL 进行细胞计数;后续操作参照“冻存神经元的复苏与培养”的步骤 8 进行。
四、冻存神经元的复苏与培养
冻存的原代神经元对操作条件高度敏感。细胞在复苏过程中极易受损,务必避免剧烈振荡或离心操作。建议仅解冻一管细胞,并尽量缩短从液氮转移到 37 °C 水浴解冻的时间。为提高细胞贴壁率与回收率,推荐在使用前用神经元完全培养基充分冲洗所有塑料或玻璃耗材内表面。
1.使用神经元完全培养基冲洗无菌 15 mL 锥形管,在超净台中晾干备用。
2.从液氮罐中取出细胞冻存管,轻拧管盖释放压力后重新拧紧。
3.在 37 °C 水浴中轻柔晃动冻存管快速解冻(不超过 2 min)。当仅残留少量冰晶且管体仍感觉冰冷时取出。
4.在洁净工作台上轻敲冻存管使细胞液沉降。使用预冲洗并干燥的 1 mL 无菌吸头,轻柔将细胞转移至准备好的 15 mL 锥形管中。
5.用 1 mL 预热的神经元完全培养基冲洗冻存管,随后以每秒一滴的速度缓慢滴加至细胞悬液中。每滴加入后轻轻旋转锥形管,避免一次性加入全部培养基。
6.再缓慢加入 2 mL 预热的完全培养基,使总体积达到 4 mL。使用 1 mL 吸头轻轻混匀,注意避免气泡产生。
7.用事先冲洗干燥过的吸头取 10 μL 细胞悬液,与等体积 0.4% 台盼蓝混合,评估活细胞数。复苏后细胞活率应大于 50%。
8.将细胞接种至预先经多聚赖氨酸包被的 24 孔板中,每孔接种约 2×10⁵ 个细胞(或根据实验需求调整)。加入预热的完全培养基稀释至每孔 500 μL。将培养板置于 37 °C、5% CO₂培养箱中培养。
-20℃,2年。
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