您的购物车当前为空

| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 50 T | ¥ 1,034 | 10-12日内发货 |
SDH 催化山梨醇脱氢生成果糖,同时还原 NAD+生成 NADH,测定 340nm 吸光度增加速率可以计算 SDH 活性。
50T/48S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0141UV-ES | 液体60ml×1 瓶 | 4℃保存 |
| CB0141UV-A | 液体20ml×1 瓶 | 4℃保存 |
| CB0141UV-B | 粉剂×1 瓶 | 4℃保存;临用前每瓶加入 15mL 蒸馏水,用不完的试剂仍 4℃保存。 |
| CB0141UV-C | 粉剂×1 瓶 | -20℃保存;临用前每瓶加入 15mL 蒸馏水,用不完的试剂仍-20℃保存。 |
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1 mL 石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
二、粗酶液提取:
1.细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104 个):提取液体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL CB0141UV-ES),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次); 8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
2.组织:按照组织质量(g):CB0141UV-ES体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL CB0141UV-ES),进行冰浴匀浆,8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测
3.血清(浆)样品:直接检测。
三、测定步骤:
1.分光光度计预热 30min,调节波长到340 nm,蒸馏水调零。
2.在1ml石英比色皿中按顺序加入下列试剂:
| 试剂名称 | 测定管(µL) |
|---|---|
| CB0141UV-A | 400 |
| CB0141UV-B | 300 |
| CB0141UV-C | 300 |
| 混匀,37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)准确水浴 5min | |
| 样本 | 50 |
| 加样本的同时开始计时,记录20s时的初始吸光度A1和2min 20s时的吸光度A2,计算ΔA=A2-A1。 | |
四、计算公式:
1.血清(浆)SDH 活力的计算
单位的定义:每毫升血清(浆)每分钟生成 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
SDH (nmol/min/mL) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷V样÷T = 1688×ΔA
2.组织、细菌或细胞中 SDH 活力的计算
(1)按样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟生成 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
SDH (nmol/min/mg prot) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr)÷T = 1688×ΔA÷Cpr
(2)按样本鲜重计算:
单位的定义:每 g 组织每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
SDH (nmol/min/g 鲜重) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W× V样÷V样总)÷T = 1688×ΔA÷W
(3)按细菌或细胞密度计算:
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟生成 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
SDH (nmol/min/104 cell) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总)÷T=3.376×ΔA
V反总:反应体系总体积,1.05×10-3 L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d: 比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.05 mL;V样总:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,2 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500 万。
1.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
2.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

版权所有©2015-2025 TargetMol Chemicals Inc.保留所有权利.
沪ICP备20019793号-4 | 沪公网安备 31010602006700号
| 沪(静)应急管危经许[2024]203441