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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 50 T | ¥ 715 | 4-6日内发货 |
GDH催化NH4 +、α-酮戊二酸和NADH,生成谷氨酸和NAD+,引起340nm吸光度下降。通过测定340nm吸光度的下降速率,计算GDH活性。
50T/48S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0120UV-ES | 60mL×1 瓶 | 4℃保存; |
| CB0120UV-A | 60mL×1 瓶 | 4℃保存; |
| CB0120UV-B | 粉剂×1支 | 4℃保存; |
| CB0120UV-C | 粉剂×1支 | 4℃保存; |
| CB0120UV-D | 粉剂×1支 | -20°C保存; |
| 工作液配制:CB0120UV-B、C、D转移到试剂CB0120UV-A中混合溶解,置于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)水浴 5min;现配现用; | ||
一、自备用品:
紫外分光光度计、1ml石英比色皿、水浴锅、可调式移液枪、离心机、冰和双蒸水。
二、粗酶液提取:
1.细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液CB0120UV-ES,超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次);8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
2.组织:称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液CB0120UV-ES,进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
3.血清(浆)样品:直接检测。
三、测定步骤:
1.紫外分光光度计或酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 340nm,蒸馏水调零。
2.样本测定,
取 50μL 样本和 1mL 工作液(需要现配)于 1mL 比色皿中,混匀,加工作液的同时开始计时,在340 nm波长下记录 20 秒时的初始吸光度 A1 和 5 分 20 秒时的吸光度 A2,计算 ΔA=A1-A2。
四、GDH活性计算:
1.血清(浆)中 GDH 活力的计算:
单位的定义:每毫升血清(浆)每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
GDH (U/mL) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109 ]÷V样÷T = 675×ΔA
2.组织、细菌或细胞中 GDH 活力的计算:
(1)按样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
GDH (U/mg prot) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109 ]÷(V样×Cpr)÷T = 675×ΔA÷Cpr
(2)按样本鲜重计算:
单位的定义:每 g 组织每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
GDH (U/g 鲜重) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109 ]÷(W× V样÷V样总) ÷T = 675×ΔA÷W
(3)按细菌或细胞密度计算:
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟消耗 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。
GDH (U/10 4 cell) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109 ]÷(V样÷V样总×500)÷T =1.35×ΔA
注: V反总:反应体系总体积,1.05×10-3 L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.05 mL;V样总:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,5 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量(g);500:细菌或细胞总数,500 万。
1.当ΔA大于0.5时,将样本进行稀释后测量
2.由于提取液中含有一定浓度的蛋白(约1mg/mL),所以在测定样本蛋白浓度时需要减去提取液本身
的蛋白含量。
2.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
3.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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