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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 50 T | ¥ 440 | 10-12日内发货 |
NADH 和 NADPH 均在 340nm 有特征吸收,因此 TH 催化的转氢反应不能导致 340nm 吸光度发生变化。用人工合成底物 3-乙酰吡啶腺嘌呤二核苷酸(APAD+)替代 NAD+,TH-2 催化 APAD+ 还原生成 APADH,APADH 在 375nm 有特征光吸收,测定 375nm 光吸收的增加 速率,来计算 TH-2 活性。
50T/48S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0177UV-A | 50 mL×1 瓶 | -20℃保存; |
| CB0177UV-B | 25 mL×1 瓶 | -20℃保存; |
| CB0177UV-C | 25 mL×2 瓶 | 4℃保存。 |
| CB0177UV-D | 粉剂×2 支 | -20℃保存; |
| CB0177UV-E | 粉剂×2 支 | -20℃保存; |
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 石英比色皿、研钵、冰和蒸 馏水。
二、样品的制备:
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离
1.准确称取 0.1g 组织或收集 500 万细胞,加入 1mL CB0177UV-A,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
2.将匀浆液 600g,4℃离心 5min。
3.弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心 10min。
4.上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白,可用于测定从线粒体泄漏的 TH-2(此步可选做)。
5.步骤 4 中的沉淀即为线粒体,加入 500μL CB0177UV-B,超声波破碎(冰浴,功率 20% 或 200W, 超声 3s,间隔 10 秒,重复 30 次),用于 TH-2 活性测定。
三、测定步骤:
1.分光光度计/酶标仪预热 30 min 以上,调节波长到 375 nm,蒸馏水调零。
2.工作液的配制:临用前取CB0177UV-C、D、E各一支,将CB0177UV-D、E转移到CB0177UV-C中混合溶解,置于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)水浴 5min;现配现用;
3.在1mL 石英比色皿中按顺序加入下列试剂:
| 试剂名称 | 测定管(μL) |
|---|---|
| 样品 | 100 |
| 工作液 | 1000 |
| 混匀,立即记录 375 nm 处初始吸光值 A1 和 10min 后的吸光值 A2,计算 ΔA=A2-A1。 | |
四、TH-2含量计算公式:
(1)按样本鲜重计算
单位的定义:每 g 组织每分钟产生 1 nmol APADH 定义为一个酶活性单位。
TH-2 活性 (nmol/min/g 鲜重) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W× V样÷V样总) ÷T = 82×ΔA÷W
(2)按样本蛋白浓度计算
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟产生 1 nmol APADH 定义为一个酶活性单位。
TH-2 活性 (nmol/min /mg prot) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr)÷T = 164×ΔA÷Cpr
(3)按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟产生 1 nmol APADH 定义为一个酶活性单位。
TH-2 活性 (nmol/min /104 cell) = [ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总) ÷T = 0.164×ΔA
注: V反总:反应体系总体积,1.1×10-3L;ε:APADH 摩尔消光系数,6.7×103 L/mol/cm;d: 比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.1mL;V样总:加入提取液体积,0.5mL;T: 反应时间,10 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞 总数,500 万。
1.蛋白定量测定,建议使用TargetMol生产的BCA Protein Quantification Kit (C0050)。
2.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
3.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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