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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 50 T | ¥ 462 | 10-12日内发货 |
NADP-ME 催化 NADP+还原成 NADPH,在 340nm 下测定 NADPH 增加速率。
50T/48S规格的产品组成及保存条件:
| 编号 | 规格 | 储存条件 |
|---|---|---|
| CB0184UV-ES | 60mL×1瓶 | 4℃保存 |
| CB0184UV-A | 40 mL×1 瓶 | 4℃保存 |
| CB0184UV-B | 20 mL×1 瓶 | 4℃保存 |
| CB0184UV-C | 粉剂×1 瓶 | 4℃保存;用时加入 2mL 蒸馏水,溶解后 4℃可保存一周 |
| CB0184UV-D | 粉剂×1 瓶 | -20℃保存;用时加入 1mL 蒸馏水,溶解后备用,现用现配 |
正式测定前务必取2-3 个预期差异较大的样本做预测定。
一、自备用品:
可见分光光度计、恒温水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1ml石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
二、样品制备:
1.细菌、细胞或组织样品的制备:
细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次);8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
2.血清(浆)样品:直接检测。
三、测定步骤:
1.分光光度计预热30min,调节波长至340nm。
2.将试剂A、B、C和D置于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)水浴 10min 以上。如果一次性测定样本较多,
可将试剂A、B、C和D按下表比例配成混合液后置于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)水浴 10min 以上(混合液现配现用)。
3.酶促反应(按顺序加入下列试剂:)
| 试剂名称 | 对照管(µL) |
|---|---|
| 试剂A | 600 |
| 试剂B | 225 |
| 试剂C | 30 |
| 试剂D | 15 |
| 样本 | 30 |
| 混匀,立即记录 340 nm 波长下初始吸光度 A1和反应 1min 后的吸光度 A2,计算 ΔA=A2-A1。 注:如果 ΔA<0.005,可将反应时间延长到 2 分钟或 5 分钟。 |
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四、计算公式:
1.按组织蛋白浓度计算:
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟生成 1 nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。
NADP-ME(U/mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr) ÷T= 4823×ΔA÷Cpr
此法需要自行测定样本蛋白质浓度。
2.按样本鲜重计算:
单位的定义:每 g 组织每分钟生成 1 nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。
NADP-ME(U/g 鲜重)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W× V样÷V样总) ÷T =4823×ΔA÷W
3.按细菌或细胞密度计算:
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟生成 1 nmol NADPH 定义为一个酶活力单位。
NADP-ME(U /104cell)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总) ÷T =9.646×ΔA
注:V反总:反应体系总体积,9×10-4L;ε:NADPH 摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.03 mL;V样总:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,1 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500 万。
1.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
2.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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