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规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
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100 T | ¥ 1,436 | 5日内发货 | |
100 T * 5 | ¥ 4,316 | 5日内发货 |
DARTS的基本原理是:当小分子化合物与靶蛋白结合后,蛋白的三维结构会发生构象变化,使其对蛋白酶(如胰蛋白酶、热蛋白酶K等)的降解敏感性降低,从而表现出更高的“结构稳定性”。
在未结合化合物的样品中,蛋白质在蛋白酶的作用下容易被水解降解;而在加入药物的小分子处理组中,与药物结合的靶蛋白会被保护不被降解。通过比较两组样品中蛋白残留量的差异,即可初步判断药物与蛋白的结合关系。
DARTS方法的核心优势在于:
100 T规格的产品组成如下:
产品编号 | 产品名称 | 产品包装 |
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C0191-1 | Lysis Buffer | 10 mL |
C0191-2 | Protease | 2 mg |
C0191-3 | Protease Inhibitor Cocktail (100×) | 0.1 mL |
C0191-4 | Loading Buffer (5×) | 2 mL |
小分子药物的靶点筛选与验证、蛋白质与配体相互作用研究、药物作用机制探索。
图1. 药物亲和反应靶蛋白稳定性检测试剂盒用于检测乙酰缬草三酯(Acevaltrate, ACE)对于PCBP1蛋白稳定性的效果图。
HCT116细胞(人结肠癌细胞)裂解后,取5 µL浓度为0、0.125、0.25、0.5、1、2 mM的ACE化合物溶液加入至每组体积为100 µL、蛋白量为100 µg总蛋白中,使最终药物浓度为0、6.25、12.5、25、50、100 µM,室温旋转摇床孵育60 min。然后,加入4 µL稀释好的Protease (0.1 µg/µL) (即Protease:Protein=1:250),混匀,37ºC孵育30 min。接着加入1 µL Protease Inhibitor Cocktail (100×) 终止酶解反应,并加入适量Loading buffer (5×),100ºC加热10 min使蛋白变性。最后,通过Western blot检测PCBP1蛋白的酶解情况。结果显示,ACE在100 µM下增强了PCBP1蛋白的稳定性,这表明ACE可能与PCBP1蛋白有结合并增强了其对于蛋白酶的耐受性。实际检测效果会因实验条件、检测仪器等的不同而存在差异,图中效果仅供参考。
参考文献:Yu D, Hu H, Zhang Q, et al. Acevaltrate as a novel ferroptosis inducer with dual targets of PCBP1/2 and GPX4 in colorectal cancer. Signal Transduct Target Ther. 2025 Jul 7;10(1):211.
1. 细胞收集与裂解:
将HCT116细胞吹散后接种于100 mm培养皿中,培养至细胞密度为85%-90%后,吸除培养基,用PBS洗涤细胞两次后弃掉,再次加入1 mL PBS,用细胞刮刀迅速将细胞从培养皿上刮下(或用胰酶消化收集),转移至1.5 mL离心管中,200 g离心5 min,将PBS弃去。加入适量新鲜配置的含蛋白酶抑制剂以及磷酸酶抑制剂的Lysis Buffer轻轻吹散,置于冰上裂解15 min,12000 rpm、4℃离心15 min。收集离心后的上清液,测定蛋白浓度。推荐使用BCA法或Bradford法进行蛋白定量。根据蛋白浓度测定结果调整蛋白浓度,确保蛋白浓度在1-5 mg/mL。
注:蛋白样品制备完成后,建议立即进行后续实验步骤。若需保存,可将样品分装成适当体积后置于-80°C 保存。长期储存时应尽量避免反复冻融,以防止蛋白降解或活性损失。
2. 酶解比例探索(推荐优先确认酶解比例):
a)配置Protease储备液:用超纯水配置为10 µg/µL,分装后置于-20℃保存,避免反复冻融,建议在6个月内使用完毕。
b)配置不同比例的酶工作液:取一管母液置于冰上融化,融化后取4 µL加入196 µL超纯水(稀释成50倍,即0.2 µg/µL)。现配现用(最终保证终浓度为Protease浓度为1:125,1:250,1:500,1:1000,1:2000,1:4000,1:8000,1:16000共8个浓度),具体需根据实验结果调整稀释比例。
下表是以各组样本总蛋白量为100 µg为例,2倍稀释共配置8管酶工作液,最终配置好后A-G每管100 µL,H管200 µL。另外准备1管200 µL不加酶的超纯水作为空白对照。
酶工作液编号 | 酶与蛋白浓度比例 | 所需酶总量(µg) | 所需酶浓度(µg/µL) | 酶用量(µL) | 超纯水用量(µL) |
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A | 1:125 | 0.8 | 0.2 | 4 µL酶母液 | 196 |
B | 1:250 | 0.4 | 0.1 | 100 µL A | 100 |
C | 1:500 | 0.2 | 0.05 | 100 µL B | 100 |
D | 1:1000 | 0.1 | 0.025 | 100 µL C | 100 |
E | 1:2000 | 0.05 | 0.0125 | 100 µL D | 100 |
F | 1:4000 | 0.025 | 0.00625 | 100 µL E | 100 |
G | 1:8000 | 0.0125 | 0.003125 | 100 µL F | 100 |
H | 1:16000 | 0.00625 | 0.0015625 | 100 µL G | 100 |
c)上述9管样品每管混匀后涡旋离心,在37℃恒温下孵育30 min。
d)孵育结束立即加入Protease Inhibitor Cocktail (100×)终止酶解反应。
e)每管加入定量Loading Buffer (5×)(例如100 µL的反应体系加入25 µL的Loading Buffer (5×)),100℃加热10 min终止反应,于-20℃暂时保存样品。
f)进行Western检测PCBP1蛋白的酶解情况。检测结果如下图。
图2. 药物亲和反应靶蛋白稳定性检测试剂盒用于不同Protease与总蛋白比例的检测效果图。
每组100 µL 100 µg的HCT116细胞总蛋白,加入4 µL稀释好的Protease工作液。混匀,37℃孵育30 min进行蛋白消化。孵育结束后加入1 µL Protease Inhibitor Cocktail (100×) 终止反应,并加入Loading buffer (5×),混匀后100℃加热10 min。随后通过Western blot检测PCBP1蛋白的酶解情况。结果显示Protease和蛋白比例约为1:250时,蛋白条带变化明显,便于后续实验观察小分子药物是否能影响蛋白的稳定性。实际检测效果会因实验条件、检测仪器等的不同而存在差异,图中效果仅供参考。
3. 药物处理:
a)根据参考文献或实验设计,设置合适的药物浓度梯度,并由药物母液逐级稀释,制备所需浓度的药物工作液。例如,可设置0、0.125、0.25、0.5、1、2 mM等不同浓度。每次实验应包含两类对照组:阴性对照组(Negative Control):未加入Protease;空白对照组(Blank Control):既不加Protease,也不加药物,仅加入药物对应的溶剂(如纯水或DMSO)。推荐每管加入100 µL、1 mg/mL的蛋白样品(即总蛋白量约100 µg),蛋白浓度与体积应与步骤2b保持一致。
b)在各实验管中分别加入5 µL不同浓度的药物工作液。空白对照组中加入等体积的药物溶剂(如纯水或DMSO)。轻轻混匀后,于室温摇床孵育60 min,或在4°C条件下避光孵育过夜。孵育的温度与时间可根据药物性质及参考资料调整。
4. 酶解处理:
a)配置Protease储备液:用超纯水配置为10 µg/µL,分装后置于-20℃保存,避免反复冻融,建议在6个月内使用完毕。
b)制备Protease工作液:根据步骤2中确定的Protease与样品中总蛋白量的比例,从Protease储备液稀释制备所需浓度的Protease工作液。稀释操作应在冰上进行,以保持酶的稳定性和活性。
c) 加酶反应:在各实验组中加入4 µL预先稀释好的Protease工作液;在阴性对照组中加入等体积的超纯水代替Protease。
注:酶解前的蛋白样品应始终保持在冰上或4°C条件下。
d) 酶解孵育:轻轻混匀后短暂离心,使液体集中于管底。将样品置于37°C恒温孵育30 min以进行蛋白酶消化。
e) 终止反应:孵育结束后,立即加入Protease Inhibitor Cocktail (100×) 以终止酶解反应。例如在100 µL反应体系中加入1 µL Protease Inhibitor Cocktail (100×)。
5. 样品处理和保存:
通常可通过多种检测手段评估药物对靶蛋白稳定性的影响:
若研究目的蛋白已知,可利用Western blot分析其在药物处理前后对蛋白酶消化的耐受性变化;
若需探究药物对未知靶标蛋白的作用,则可采用LC-MS/MS鉴定药物结合后蛋白稳定性的变化;
对于具有明确酶活性的靶蛋白,还可结合酶活性检测方法进行高通量筛选;
此外,在靶标蛋白明确的情况下,也可根据实验需求选择 ELISA 等其他检测方式。
以下以Western blot与LC-MS/MS检测为示例:
a)根据样品体积加入相应比例的Loading buffer (5×),例如在100 µL的反应体系中加入25 µL Loading buffer (5×)。
b)在100°C加热10 min,使蛋白充分变性。
c)加热处理后的样品可直接用于后续分析。若验证药物的已知靶点,可直接进行Western blot检测;若探索未知靶点或新型作用蛋白,可采用LC-MS/MS等蛋白组学分析。如样品暂不使用,应立即置于-80°C保存,以防止蛋白降解或结构变化。
-20℃,1年。
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